给您来个专业点的而且网上找不到的答案吧：
1、外植体选取
就是选择组培材料。
可以是根、茎、叶、花、果、胚乳、花粉等等。
主要工作是选取生物活性高的易成活的易分化的部位做为试验材料。
2、无菌体系建立
就是把外界采来的材料经过消毒接种到合适的培养基上。
主要工作是选取外植体消毒方式，培养基类型，激素配比。
3、继代培养
就是把长成的无菌苗接到新的培养基上，继续培养（继代）或者扩大培养（扩繁）。
主要工作是选取合适的培养周期，接种方式，激素配比。
4、生根培养
就是通过激素调节让先前继代培养的无菌苗长出根系。
主要工作是调节激素配比，让长出的根系粗壮有力，有助于提高下一步移栽的成活率。
5、移栽
就是把生根的无菌苗通过一定时间来适应外界有菌环境（复壮）然后移栽到室外的有菌环境中。
主要工作是选取合适的环境条件来壮苗，选取合适的壮苗时间，选取合适的移栽基质，选取合适的基质消毒方式，选取合适的室外培养环境条件。

纯个人手写，纯多年经验，希望能帮到您。

主要：灭菌：试验器材、试验环境、试验试剂、试验材料
接种：把试验材料放于培养基
培养：光照培养箱或组培室，调节光、温、湿
继代：保存材料或扩繁材料
生根：生根以便于移栽

植物组织培养中的杀菌方法有哪些?如何做到各个环节上的无菌? 对人的实验仪器的无菌处理。培养液中加入抗生素。（记不起来了）

MA培养基配方如下：
http://algae.ihb.ac.cn/search/data/MA%20medium.htm#MA medium.htm#

查询各种培养基的地址，可以到“中国淡水藻种库”。该网属于中国科学院水生生物研究所办。

楼主作组培，还是建议你根据不同的外植体，选择不同的培养基，有些培养基成分需要修改才能为你所用。总之，找到一个适合的培养基既需要前人的经验，更需要自己的尝试。

玫瑰组织培养的方法
2.1外植体选取从生长在田间或盆32313133353236313431303231363533e78988e69d8331333365636566栽的优良品种植株上，选取生长健壮、无病虫害的当年生枝条的茎尖和幼茎。取材最好在晴天正午，并且取用植株上部的幼茎。阴雨天或靠近地面的幼茎，表面污染较为严重，难于消毒。玫瑰除用茎尖和幼茎做外植体外，也可以用叶片、叶柄、根、茎、原生质体、胚、花药、子房、花萼和花托做外植体[7]。
2.2消毒灭菌及无菌苗的建立取玫瑰外植体，用5%～10%的次氯酸钠浸泡10～30min或用01%～02%的HgCl浸泡5～15min。用无菌水清洗7～10次后接种。也可先用75%的酒精浸泡20～30s再采用上述方法消毒。消毒灭菌完毕后，将幼茎切割成05～10cm长的至少带有一个节的切段，接种于培养基中[6]。
2.3愈伤组织的诱导Hill(1967)最早报道从杂交茶香月季(hybridtearose)的茎上诱导了愈伤组织，该实验证明在培养基中添加2，4-D或添加NAA和激动素KT均能很快诱导出愈伤组织。随后不同实验以不同品种为试验材料，从叶、叶柄、根、茎、原生质体、合子胚、花药、子房、花瓣、花萼、和花托成功地诱导了愈伤组织。[7]
2.3.1愈伤组织的成功诱导与品种的基因型有关?摇Lloyd等(1988)曾研究Roseprsica与xanthina，hybrida，Clarissa，Rcabrosa的愈伤发生能力，发现只有Rosepersica与xanthina在MS基本培养基上，添加低浓度的BAP和NAA时，节间能产生愈伤，愈伤组织脆弱，呈淡黄绿色。Kunitake等(1993)研究了RoserugosaThunb，Rosemultiflora，Roseallbacv，SemiplenaRosehybridacv，DuplesRoseharisonii，Rosespinosissi的未成熟种子的愈伤发生能力，发现只有RoserugosaThurb能产生愈伤组织，品种Rontl和Soraya比品种Baccara和Mercedes更易产生愈伤(Kintzios等，1999)。[7]
2.3.2外植体类型?摇Aren等(1993)详细地调查了RosehybridacvMeirutral不同外植体的愈伤诱导率，发现不同外植体愈伤产生的能力不同，叶为90%，根为70%，节间为55%，花药为19%。
2.3.3激素激素也是影响愈伤生成的重要因素，Rout等(1991)以Landora为材料，在添加BA和NAA，2，4-D的MS的培养基上，外植体在接种的7～12d后，在近轴面的叶柄和中脉处产生愈伤，愈伤组织诱导频率高达92%。在接种后15～20d，外植体茎切端处产生愈伤，诱导率为76%。生长素种类和浓度对愈伤产生能力的影响同样很大。早期实验多采用NAA结合BAP或BA等，近年来多采用2，4—D，并证明2，4—D是诱导愈伤的必要因素(Kintzios等，1999;Rout等，1996;vanderSalm等，1996;Vises—suwan等，1997)。进一步研究发现2，4-D对愈伤的诱导效果依赖于月季的基因型，如2，4—D浓度从113umol/L增加到181umol/L降低了Rosehybrida栽培种“Care-freeBeauty”的愈伤诱导频率，但该浓度则对另一个品种“GrandGala”无影响。对于“RedSunblaze”而言，当浓度从113umol/L增加到452umol/L，则表现出愈伤的诱导率提高了，随后当2，4—D再增加，则显著地降低愈伤的诱导频率。愈伤组织在诱导愈伤组织的培养基上能得到很好继代培养(subculture、Li等，2002)。VanderSalm等(1996)证明2，4—D对诱导Rosepersica与xanthina和Moneyway产生愈伤是日夏养花网非常必要的，进一步添加低浓度的BA有正效应，但如BA浓度过高，则产生抑制作用。与以上实验结果不同，Kintzios等(1999)则发现2，4—D对愈伤诱导有负影响作用，可能因为采用的外植体是成熟的叶片。
2.3.4合子胚的发育时期对愈伤的形成能力也有影响?摇如处于心形胚的合子胚，其愈伤诱导率只有2%，子叶胚时的合子胚愈伤诱导率达到85%。[7]
2.4不定芽的诱导月季的常规繁殖方式主要靠扦插、嫁接和压条等，繁殖系数低，远远满足不了生产的需要。80年代初，采取组织培养方法快速繁殖月季苗，用侧芽、顶芽、并诱导生根。第一报道月季不定芽形成见Elliott(1970)，他在聚花月季(Rosemultiflora)上成功地诱导了不定芽的形成，并诱导幼苗生根。Zieslin和Halevy(1976)报道细胞分裂素有利于提高不定芽的数量，但也诱导花www.rixia.cc器官败育或退化的频率。不定芽的诱导与供试材料的基因型有关，同时还与外植体的取材部位有关，来源于枝条中部的侧芽的繁殖速率最快(Bressan等http://www.rixia.cc，1982)。培养基中添加蔗糖有增加丛芽数量的作用(Langford和wainwright，1987);加入低浓度的GA能进一步改善芽繁殖，95%的外植体能产生7个以上的不定芽(Rout等1990)。能提高芽繁殖数量的物质还有月桂酸甲酯(Voyiatzi等，1995)、乙烯(Kevers等，1992)等。诱导不定芽的培养基为MS培养基添加低浓度的激素BAP03～05mg/L，NAA0004～03mg/L或IAA或GA00～20mg/L。[7]Martin等(1981)调查了2125个玫瑰侧芽做外植体获得的无菌苗三年间在大田生长的情况，没有发现变异植株，这说明侧芽方式繁殖的玫瑰植株性状很稳定。
2.5增殖培养玫瑰的增殖培养，一靠无菌苗切段繁殖，二靠诱导不定芽，形成从生苗;三靠愈伤组织形成体细胞胚或原球胚。将已长大的月季嫩茎切成带1～2个节的茎段，投入新鲜的增殖培养基上，5～6周进行一次继代增殖，增殖系数平均达4～6。在外植到培养10～15d内第一叶的叶原基伸长，第二叶片叶原基可见;15～20d侧芽伸长;25～30d长度达6～10mm，继代增殖会按几何级数增长起来。[5]增殖培养基可用不定芽诱导培养基，如MS+BA03～05+NAA0004～03mg/L。
2.6壮苗与生根壮苗培养的培养基为：MS+BA03～05+NAA001～01或MS+BA03～05+IBA03。[4]也可以壮苗为主，增殖为辅，使增殖与壮苗合二为一。玫瑰组培苗增殖与壮苗需光照10～12h，光照强度2000lx，温度24～26℃。[4]
玫瑰在组培过程中，其生根能力因品种特性、所用植物材料及培养基成分而有较大差异，许多研究结果表明，玫瑰茎段微繁殖容易生根，使用植物激素IAA，IBA或NAA含量01～05mg/L，蔗糖含量2%～25%的MS培养基有利于玫瑰茎段生根。另外，光照、温度等对玫瑰微繁殖生根也有直接影响，Bressan等(1982)研究指出，光照时间每天12h以上，光照强度适宜则有利于生根。一般情况下，玫瑰茎段组织培养8～10d内则可生根。[6]加入适量的活性炭有利于玫瑰生根。
2.7炼苗与大田移栽炼苗和大田移植是玫瑰微繁殖获得成功的最后阶段。[6]组培幼苗由人为培养环境转移到天然生长环境中，环境条件发生巨大变化，湿度大幅度降低，温度不恒定，光照强烈，微生物多，故需炼苗过渡。一般玫瑰微繁殖炼苗需经过室内三天的取盖炼苗，然后将苗从瓶中取出，洗去根部培养基，定植在珍珠岩、泥炭、蛭石或沙土中，用3～5%的多菌灵喷洗。炼苗时要注意基质中的水分含量，水分太少，不能满足苗生长发育;水分太多，导致烂苗。炼苗中、后期要注意通气，给予足够的光照，其幼苗成活率可达80%以上。