（1）植物组织培养过程中，常选用处于未分化状态的细胞诱导形成愈伤组织，再先后接种在不同的培养基上，诱导形成芽和根．其中生长素和细胞分裂素能促进细胞分裂分化，在培养的不同时期对两者的比例会有不同要求，细胞分裂素和生长素的比值接近于1时诱导形成愈伤组织，再分化过程中，生长素比例高时促进根的分化，细胞分裂素比例高时促进芽的分化．
（2）由甲图可知，不加蔗糖的培养基中的植株在相同光照强度下光合速率和光饱和点要比加蔗糖的培养基高．
（3）乙图表示一昼夜中CO2浓度变化曲线，b-c段上升缓慢的原因是凌晨温度较低，酶活性降低，呼吸速率较慢导致CO2释放减少所致；c-d段急剧下降是因为光合作用消耗大量CO2所致，d点时光照强度不再是限制光合作用的因素，CO2浓度才是影响光合速率的因素，而大气中CO2浓度比日夏养花网瓶内高，所以更有利于提高光合速率．
（4）生产实践中，在试管苗移栽阶段，当试管中的植株长到5-10cm时，可先打开试管瓶口3-5天，使其适应试管外环境；从甲乙两图中可以得出不加蔗糖的培养基，适当增加CO2浓度，延长光照时间，适当增加光照强度等可以提高光合作用强度．
（5）在叶肉细胞中，CO2的固定发生在光合作用的暗反应过程中，场所为叶绿体基质；CO2的产生发生在有氧呼吸的第二阶段，场所为线粒体基质．
（6）表格中暗处理后的重量变化即为呼吸速率，表中看出29℃时呼吸速率为3mg/h，此时为最高．27℃时光照后暗处理前重量变化为+3mg，此时经过了1h的光合作用，两小时的呼吸作用，因此绿叶的净光合速率=“3+1=4“mg/h．光合速率的强度等于净光合作用的强度与呼吸作用的和，即30℃时呼吸速率为1mg/h，光合作用强度为1+12=3mg/h．
故答案为：
（1）未分化  细胞分裂素和生长素浓度    愈伤组织
（2）光合速率  光饱和点  
（3）温度较低，酶的活性降低，细胞呼吸较弱，产生的CO2较少   c-d段光照的增强，光合作用增强，消耗大量的CO2，所以CO2浓度急剧下降      升高  
（4）打开试管瓶口    无糖培养基  增加CO2浓度（答增加日夏养花网光照强度也给分）
（5）A
（6）29℃4   3

　　1．实验材料

　　将拟南芥种子经10%双氧水消毒后接种于MS培养基上，于28度、光照1Oh培养五周，长出无菌苗。在无菌条件下切取叶片和茎段，接种于MS诱导培养基上。于白天28℃（附加光照12h）、夜间2O℃温箱中培养，长出愈伤组织后转移至分化培养基上。

　　2．培养基

　　基本培养基为MS，其中诱导培养基附加植物激素IAAO．5－2mg，分化培养基附加6BAO．5-1mg，IAAO．5mg；蔗糖2Og，琼脂1．2%，pH5．8。

　　3．叶片脱绿

　　将叶片放到盛有95op乙醇的eP－pendoff管中，用针头在盖上刺一小孔，在7O℃水浴中保温至叶绿素消失（约需2Omin）。如果需要完全去除叶绿素，则应在保温IOmin时日夏养花网更换一次乙醇。二结果与讨论1．愈伤组织的诱导和试管苗的分化在诱导培养基上培养1周，叶段和茎段的切口处开始膨大，两周后愈伤组织生长良好，表面呈粒状，局部变绿。在一些外植体上长出根系，在带芽的茎段上直接长出小苗。将愈伤组织切下转人分化培养基上，五周后就有芽和根分化，两周后小苗生长正常。将完整的试管苗取下转入新培养基上，l周后从苗基部生长出次生苗。在原培养基上生长2～3周后，将试管苗移入土壤可成活。

　　据报道，胡萝卜是第一个组织培养成功的植物，多年来一直是植物组织培养技术培训和教学的经典材料，但我们的实验表明，拟南芥也是一种组织培养的示范材料，这主要基于以下事实：

　　（1）易获得无菌苗。种子经表面消毒后接种于培养基上，五周后就可得到足够大且健壮的无菌苗，在无菌条件下切断并接种，几乎不会发生污染。相反，若对外植体进行表面消毒对初学者来说是较困难的，消毒时间长会导致外植体被"杀死"，而时间短又达不到完全消毒，且消毒剂的残留也会影响外植体的生长。另外，由于外植体的表面消毒步骤较多，很容易引起再污染，因此我们认为对初学者来说易于获得无菌苗是http://www.rixia.cc十分重要的。

　　（2）愈伤组织的诱导和试管苗分化周期较短。本实验结果表明，从愈伤组织诱导到完整植株再生只需1个月。

　　（3）植株分化率高，几乎所有的外植体都能诱导分化出苗。

　　（4）试管苗的繁殖速度快。将单一的试管苗分割后转入新的培养基上，1周后从其基部长出次生苗，长到一定大小后又产生新的次生苗，这样，2O多天后就可可由一株试管苗产生出100多株。

　　（5）诱导与分化所需条件简单。诱导培养基中只加IAA，且在一定浓度范围内均有效，分化所需激素也较简单。

　　2器官的观察

　　叶片脱绿后，在低倍或高倍显微镜下可直接观察气孔、表皮毛、维管束等的三维结构。与其他高等植物一样，拟南芥的气孔也是由两个大的保卫细胞构成，在细胞内侧（靠气孔一侧）分布有叶绿体。观察到了不同结构的表皮毛，最多是三叉的，也有极少数是双叉或单叉的。观察维管束发现，叶尖端的纸管束最先分化，越是靠近叶基部的纸管束分化水平越低。

　　气孔是植物的"口"，是植物与外界进行气体和水分交换的主要通道，通过观察气孔的立体结构有助于了解气孔的开闭机理，进而了解植物对气体和水分交换的调节机理。拟南芥的表皮毛是很特殊的，它是由单细胞构成，它的发育与分化相对简单，是研究高等植物细胞分化调控的极好材料，目前已有2O多种影响表皮毛发育的基因被鉴定出来。本实验中观察到的单叉和双叉表皮毛就有可能是基因突变所引起的，因为三叉是拟南芥表皮毛的正常结构。维管束是高等植物的主要组织之一，它的分化程度可以标志细胞的整体分化水平，叶片脱绿后能够很清楚地看到其维管束，因此通过这种方法可以研究植物细胞的分化。

　　3.开花的诱导

　　试管苗在分化培养基生长约2O大，大部分植株的顶端形成花器官，几天内花朵开放。解剖观察，花器官发育正常，每朵花苞各含4枚等片、花瓣和雄蕊及1枚雌蕊，涂片可看到发育良好的花粉粒，有的1OO多个丛生苗的植株上几乎都有花器官形成。

　　在日照10h条件下，拟南芥只进行营养生长，且其莲座叶生长很快，而在12h条件下培养，其莲座叶不再生长，而是抽苔开花，这说明拟南芥是一种长日照植物。植物开花的决定性因素是日照长短，而与植株的大小没有必然联系，有些植株仅O．5cm高就开花了。拟南芥的花器官诱导所需时间短，开花快，花朵多，因此我们认为它也是高等植物开花诱导实验的好材料。另外，根据报道，拟南芥与矮牵牛的花器官发育调控具有"ABC"理论，即随着花器官基因发生突变，四轮花器官可相互转变，这对研究高等植物花的成因具有十分重要的意义。

把黄枪头剪掉2-3mm，然后用枪头吸取无菌水悬浮的拟南芥种子用点点儿的方式播种与MS平板上。测定种子发芽率的时候很好用。

我在实验室如果在培养基上点，一般用灭过菌的牙签，将牙签蘸一下培养基，就会有粘性，可以一粒一粒点种子，至于怎么将拟南芥点整齐，一般在培养皿下面垫一张划着直线的滤纸，沿着直线点就可以了。蓝色枪头一般用在将种子直接点在基质上。

的拟南芥幼苗转移到MS 培养基上培养,以研究拟南芥幼苗叶生长的情况.分别取然后将拟南芥种子重悬于无菌水待播。 2.潮霉素抗性浓度的筛选将拟南芥

用最大号的蓝色枪头点播种子

一般来说茎尖、幼芽等部位是整株植物中含毒素最少或没有的部位。不太明白的话可以看组织培养的意义：
1、占用空间小，不受地区、季节限制。 　　2、培养脱毒作物 　　3、培养周期短 　　4、可用组培中的愈伤组织制取特殊的生化制品 　　5、可短时间大量繁殖，用于拯救濒危植物 　　6、可诱导之分化成需要的器官，如根和芽 　　7、解决有些植物产种子少或无的难题， 　　8、不存在变异，可保持原母本的一切遗传特征 　　9、投资少，经济效益高 　　10、繁殖方式多，试用品种多11、培养条件可以人为控制 　　
组织培养采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。 　　2、生长周期短，繁殖率高 　　植物组织培养是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培养条件，因此生长较快。另外，植株也比较小，往往20-30天为一个周期。所以，虽然植物组织培养需要一定设备及能源消耗，但由于植物材料能按几何级数繁殖生产，故总体来说成本低廉，且能及时提供规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。 　　3、管理方便，利于工厂化生产和自动化控制 　　植物组织培养是在一定的场所和环境下，人为提供一定的温度、光照、湿度、营养、激素等条件，极利于高度集约化和高密度工厂化生产，也利于自动化控制生产。它是未来农业工厂化育苗的发展方向。它与盆栽、田间栽培等相比省去了中耕除草、浇水施肥、防治病虫等一系列繁杂劳动，可以大大节省人力、物力及田间种植所需要的土地。

植物茎中的病毒在沿着植物的输导组织向上传的，而在茎尖约0.1到0.2毫米的地方是没有病毒的，所以取植物的茎尖进行组织培养，后代的植株基本上是没有病毒的。

如果先诱导根，再诱导芽，两者的维管束很难对接，所以都是先诱导芽再生根，移栽后才保证成活。

根据植物生长特性，先诱导芽了，再让其长根就得一完整植株。