菊花的茎尖组织培养脱毒：材料的选择和消毒，脱毒苗培养鉴定，移栽
菊花的组培快繁：外植体材料选择与灭菌，诱导、继代培养，生根、移栽

制作培养基，灭菌。
在超净工作台里，切取茎尖，在升汞里灭菌，移栽到培养基内。
培养一段日子，换分生培养基。
再培养一段时间，拿出来炼苗，移栽到温室或大田

你们没有组培书么
好吧 看来是木有
概述入楼上所言
具体细节就是 培养前 工作台要开紫外灯灭菌十分钟。操作台内要有酒精灯一只。点燃。
把手及手腕处用酒精消毒。之前所有的工具要用高压灭菌才可使用。镊子什么的都要有酒精的容器放置。
好吧 一切就绪。开始操作。操作过程中手臂身体尽量绕开灭菌的东西，如培养皿，待切植物www.rixia.cc等。切割时候靠近酒精灯以保持其不被污染。用完的器具要在酒精灯上消毒后放入酒精器皿待用。待冷却后继续使用。好吧先就这些了。有不懂得可以继续提。

植物组织培养方法
1
MS培养基的配制包括以下步骤。
培养基母液的配制和保存
MS培养基含有近30种营养成分，为了避免每次配制培养基都要对这几十种成分进行称量，可将培养基中的各种成分，按原量的20倍或200倍分别称量，配成浓缩液，这种浓缩液叫做培养基母液。这样每次使用时，取其总量的1/20(50
mL)或1/200(5
mL)，加水稀释，制成培养液。现将制备培养基母液所需的各类物质的量列出，供配制时使用。
大量元素(母液Ⅰ)
mg/L
NH4NO3
33
000
KNO3
38
000
CaCl22H2O
8
800
MgSO47H2O
7
400
KH2PO4
3
400
微量元素(母液Ⅱ)
KI
166
H3BO3
1
240
MnSO44H2O
4
460
ZnSO47H2O
1
720
Na2MoO42H2O
50
CuSO45H2O
5
CoCl26H2O
5
铁盐(母液Ⅲ)
FeSO47H2O
5
560
Na2-EDTA2H2O
7
460
有机成分(母液Ⅳ)
ⅣA
肌醇
20
000
ⅣB
烟酸
100
盐酸吡哆醇(维生素B6)
100
盐酸硫胺素(维生素B1)
100
甘氨酸
400
以上各种营养成分的用量，除了母液Ⅰ为20倍浓缩液外，其余的均为200倍浓缩液。
上述几种母液都要单独配成1
L的贮备液。其中，母液Ⅰ、母液Ⅱ及母液Ⅳ的配制方法是:每种母液中的几种成分称量完毕后，分别用少量的蒸馏水彻底溶解，然后再将它们混溶，最后定容到1
L。
母液Ⅲ的配制方法是:将称好的FeSO47H2O和Na2-EDTA2H2O分别放到450
mL蒸馏水中，边加热边不断搅拌使它们溶解，然后将两种溶液混合，并将pH调至5.5，最后定容到1
L，保存在棕色玻璃瓶中。
各种母液配完后，分别用玻璃瓶贮存，并且贴上标签，注明母液号、配制倍数、日期等，保存在冰箱的冷藏室中。
MS培养基中还需要加入2，4-二氯苯氧乙酸(2，4-D)、萘乙酸(NAA)、6-苄基嘌呤(6BA)等植物生长调节物质，并且分别配成母液(0.1
mg/mL)。其配制方法是:分别称取这3种物质各10
mg，将2，4-D和NAA用少量(1
mL)无水乙醇预溶，将6BA用少量(1
mL)的物质的量浓度为0.1
mol/L的NaOH溶液溶解，溶解过程需要水浴加热，最后分别定容至100
mL，即得质量浓度为0.1
mg/mL的母液。
配制培养液
用量筒或移液管从各种母液中分别取出所需的用量:母液Ⅰ为50
mL，母液Ⅱ、Ⅲ、ⅣA和ⅣB各5
mL。再取2，4-D
5
mL、NAA
1
mL，与各种母液一起放入烧杯中。
配制培养液时应注意:①在使用提前配制的母液时，应在量取各种母液之前，轻轻摇动盛放母液的瓶子，如果发现瓶中有沉淀、悬浮物或被微生物污染，应立即淘汰这种母液，重新进行配制;②用量筒或移液管量取培养基母液之前，必须用所量取的母液将量筒或移液管润洗2次;③量取母液时，最好将各种母液按将要量取的顺序写在纸上，量取1种，划掉1种，以免出错。
溶化琼脂
用粗天平分别称取琼脂9
g、蒸糖30
g，放入1
000
mL的搪瓷量杯中，再加入蒸馏水750
mL，用电炉加热，边加热边用玻璃棒搅拌，直到液体呈半透明状。然后再将配好的混合培养液加入到煮沸的琼脂中，最后加蒸馏水定容至1
000
mL，搅拌均匀。
调pH
用滴管吸取物质的量浓度为1
mol/L的NaOH溶液，逐滴滴入溶化的培养基中，边滴边搅拌，并随时用精密的pH试纸(5.4~7.0)测培养基的pH，一直到培养基的pH为5.8为止(培养基的pH必须严格控制在5.8poXtKpqu)。
2
BA为细胞分裂素
NAA
是萘乙酸，为生长素的一种
3
适于百合根的激素暂时没找到
以下是叶片和胚的激素:对麝香百合
(LiliumlongiflorumThunb)叶片进行离日夏养花网体培养
,可成功获得无菌苗。试验结果表明
:培养基MS
+BA
0
1mg/L
+NAA
1
0mg/L适于初代培养
,有助于根和芽的分化
;MS
+BA
0
5mg/L
+NAA1
5mg/L适于增殖培养
,利于愈伤组织的产生
,并促进芽的分化
;生根培养基为
1/
2MS
+NAA
1
0mg/L
+多效唑
10
0mg/L
;当试管苗根长
1cm时移栽易成活
在含有1
mg/
L
IAA,1
m
g/
L
GA3,6
0
0
m
g/
L
CH的
MS培养基上培养
,蔗糖含量为
6
%~
8%时
,百合幼胚胚性生长最好
,培养
30
d后可以得到正常胚
.在含有
0
.1
m
g/
L
NAA,1
m
g/
L
BA的
MS培养基上可以形成淡绿色的愈伤组织
,将这些愈伤组织转移到
1
/
2
MS无激素的培养基上培养可以形成大量的不定芽
,不定芽生根移栽后
,其成活率可达90
%以上

植物组织培养可以分为四个阶段：
（1）建立无菌体系，即外植体及培养基的消毒、接种，获得愈伤组织或器官。
（2）进行增殖，不断分化产生新的植株，或直接产生不定芽及胚状体，也可以根据需要反复进行继代培养，以达到大量繁殖的目的。
（3）将植株转移进行生根培养，可以转入生根培养基，也可以直接切取进行扦插生根。
（4）试管苗过渡，即试管苗出瓶后进行一定时间对外界环境的适应过程。

一，培养基母液的配置
以常用的MS培养基为例来讲
，我们需要配置的有大量元素，微量元素，Fe盐，有机成分，植物生长调节物质母液;按照你所需要的浓缩倍数来进行配置，如我们用的是大量元素20倍。微量元素200倍
，Fe盐100倍，有机成分200倍；培养基母液的划分部分有时会根据各实验室的情况来划分，不过基本的原理都是相同的！！
二培养基配置与灭菌
植物组织培养的整个过程都是在无菌的条件下进行的，因此，我们所有的实验器具，材料，培养基等等都需要在无菌的条件下进行。
培养基的配置分为几个部分（这里以常用的固体培养基为例进行讲述）
1
各种母液的量取
2
蔗糖和琼脂的称量
3
培养基的熬制
4
定容
5
分装
培养基分装好以后就进行高温灭菌。
三
植物材料的消毒日夏养花网与接种