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急!!!多管发酵法测大肠杆菌数,复发酵管中颜色变化不完全的管子算是阳性管么?

2022-06-08 07:45:59 分类:养花问答 来源: 日夏养花网 作者: 网络整理 阅读:76

大肠杆菌检测的问题,请高手帮忙

如题,在大肠杆菌GB/T 4789.38 2008中,最终的大肠杆菌数是根据LST肉汤阳性管数查MPN表得到的,那么后面的复发酵试验和生化试验是不是可以不用做的啊?rnrn后面是不是就是为了验证以上检测的准确性的呢?rnrn请高手赐教,不胜感激涕零
如果LST肉汤管有产气的你是需要再做证实试验的,当你最终证明确实是大肠杆菌的话再依据LST肉汤管数进行计数。
例:
48h LST产气的管数是10的-1 3只,最后经过证实全部都是大肠杆菌那么查MPN表的话就查10-1 3就可以了。
如果都没有产气的话就不用做后面的证实试验了……

菌落总数大肠杆菌和致病菌的检测方法

大肠菌群测定的操作细则
大肠菌群系指一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌。该菌主要来于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
食品中大肠菌群数系以100mL(g)检样内大肠菌群最可能数(MPN)表示。
1
设备和材料
1.1
温箱:361℃。
1.2
冰箱:0~4℃。
1.3
恒温水浴
:44.50.5℃。
1.4
天平。
1.5
显微镜。
1.6
均质器或乳钵。
1.7
平皿:直径为90mm。
1.8
试管。
1.9
吸管。
1.10
广口瓶或三角烧瓶:容量为500mL。
1.11
玻璃珠:直径约5mm。
1.12
载玻片。
1.13
酒精灯。
1.14
试管架。
2
培养基和试剂
2.1
乳糖胆盐发酵管:按GB
4789.28中4.9规定。
2.2
伊红美蓝琼脂平板:按GB
4789.28中4.25规定。
2.3
乳糖发酵管:按GB
4789.28中4.10规定。
2.4
EC
肉汤:按GB
4789.28中4.11规定。
2.5
磷酸盐缓冲稀释液:按GB
4789.28中3.22规定。
2.6
生理盐水。
2.7
革兰氏染色液:按GB
4789.28中2.2规定。
3
操作步骤
3.1
检样稀释
3.1.1
以无菌操作将检样25mL(或g)放于有225mL灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内予置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1:10的均匀稀释液。固体检样最好用均质器,以8
000-10
000
r/min的速度处理1min,做成1:10的均匀稀释液。
3.1.2
用1mL灭菌吸管吸取1:10稀释液1mL,注入含有9mL灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内,振摇试管混匀,做成1:100的稀释液。
3.1.3
另取1mL灭菌吸管,按上条操作依次做10倍递增稀释液,每递增稀释一次,换用1支1mL灭菌吸管。
3.1.4
根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择三个稀释度,每个稀释度,接种3管。
3.2
乳糖发酵试验
将待检样品接种于乳糖
胆盐发酵管内,接种量在1mL以上者,用双料乳糖胆盐发酵管,1mL及1mL以下者,用单料乳糖胆盐发酵管。每一稀释度接种3管,置361℃
温箱内,培养242h,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按下列程序进行。
3.3
分离培养
将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,置361℃
温箱内,培养18-24h,然后取出,观察菌落形态,并做革兰氏染色和证实试验。
3.4
证实试验
在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1-2个进行革兰氏染色,同时接种乳糖发酵管,置
361℃温箱内培养242h,观察产气情况。凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌,即可报告为大肠菌群阳性。
3.5
报告
根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,报告每100mL(g)大肠菌群的MPN值。
4
粪大肠菌群(faecal
coliform)
4.1
用接种环将所有产气的乳糖胆盐发酵管培养物(见3.2条)转种于EC肉汤管内,置44.50.2℃水浴箱内(水浴箱内的水面应高于EC肉汤液面),培养242h,经培养后,如所有EC肉汤管均不产气,则日夏养花网可报告为阴性;如有产气者,则将所有产气的EC肉汤管分别转种于伊红美蓝琼脂平板上,置
培养18-24h,凡平板上有典型菌落者,则证实为粪大肠菌群阳性。
4.2
结果报告
根据证实为粪大肠菌群的阳性管数,查MPN检索表,报告每100mL(g)粪大肠菌群的MPN值。
菌落总数用平皿法,单位是个www.rixia.cc/ml(每毫升或毫克里面有多少的完整的菌落),方法是:在无菌操作的前提条件下,吸取1ml的原液加入到9cm的平皿里,在倒入3-5ml(37℃)的营养琼脂,在37℃的温箱里培养24小时,取出来计算它的菌落单位总数就行.
大肠杆菌用发酵法,单位是MPN/100ml(每100毫升或毫克的样品里面最大可能菌落形成单位)方法是15管法(适合食品)或9管法(适合非食品如游泳池水),用乳糖胆盐发酵管
致病菌用培养法,只要符合相应的化学,生物试验就可以判断为某致病均阳性

大肠杆菌与大肠菌群检测方法

我想请教一下各位高手,食品中大肠杆菌与大肠菌群的检测方法是什么,在国标里我只找到大肠菌群的检验方法,但没有找到大肠杆菌的检验方法,不知道哪位高手能够帮我解决这个问题,谢谢了,急用!
进入无菌室步骤
1. 进入无菌室前应打开紫光灯进行灭菌,时间为0。5—1小时。
2. 关灯后0•5小时后放可进入。
3. 进入更衣间更换衣服,佩带口罩、帽子、鞋套
实验步骤
1, 进入无菌室后,先把酒精灯点燃,然后在用酒精棉进行手部消毒。(酒精棉是用75%的酒精加入脱脂棉中制成)
2, 准备双料管3根,单料zCDsE管6根,培养皿7个。
3, 直接从原液中吸取10ml放入双料管,(3根每根各10ml)
4, 再吸取原液1ml放入单料管中(3根每根各1ml)
5, 再吸取原液1ml放入培养皿中(2个培养皿各1ml)
6, 再吸取原液1ml放入盐水管中制成-1梯度的样液
7, 更换一根吸管,从-1梯度的样液吸取1ml样液放入单料管中(3根每根各1ml)
8, 再吸取-1梯度样液1ml放入培养皿中(2个培养皿各1ml)
9, 再把每个培养皿中到入营养琼脂平铺底部摇允(注另作3个培养皿:空气空白,把培养皿打开十分钟倒入营养琼脂平铺底部摇匀。琼脂空白,把培养皿中倒入营养琼脂平铺底部摇匀。盐水空白,吸1ml生理盐水放入培养皿中,倒入营养琼脂平铺底部摇匀。)
10, 把全部作好的放入培养箱中,温度36C+-1C,大肠24H+-2H,菌落48H+-2H,(待培养皿中的琼脂凝固后反转过来放入培养箱中)
11, 梯度:-1梯度为1ml原液加入9ml生理盐水配成
-2梯度为1ml-1梯度样液加入9ml生理盐水配成
-3梯度-4梯度配制方法和-1、-2梯度的配制方法一样
12, 如果大肠初发酵产生气泡,用接种笔沾一个产气的液在伊红美兰平板上画之字形然后放入培养箱中36C,24H+-2H 。(接种笔在每次使用前必须在酒精灯上消毒。所画之形不能划破伊红美兰琼脂表面)
13, 取出后在用接种笔在伊红美兰平板之字形上挑菌,放入乳糖复发酵管中 ,然后再培养36C+-1C,24H++-2H。
14, 再在伊红美兰平板之字形上挑菌,放到载玻片上作镜检。(方法见标准)
15, 只有镜检成紫红色和乳糖复发酵管产气同时成立的情况下,才能断定这根管是不合格。
16, 清洗消毒这根试管前必须进行消毒霉菌,121C,0。5小时同时不能放气。
检测方法都是基于发酵乳糖。最可能数值法(MPN)是一种统计学方法,包括近似确证和完全验证。在检测过程中,样品要进行系列稀释。实验操作要记录发酵乳糖产气的阳性管数,然后进行另外两步实zCDsE验,利用阳性结果查统计表(见附录2),估计细菌的数量,仅前两步用于检测大肠菌群和粪大肠菌群,所有三步用于检测大肠杆菌。3管
MPN法用于检测大部分食品,5管 MPN法用于检测水,贝类和贝类养殖水。10管
MPN法用于检测瓶装水或估计本样品为受到严重污染.
另外还有一种固体平板计数法,使用VRBA培养,其含有中性红作指示剂,当发酵乳糖时产生红色菌落。还有一种膜过滤法检测大肠菌群和粪大肠菌群,主要根据发酵乳糖产酸形成不同的菌落颜色。本章节也介绍荧光法检测大肠杆菌;检测贝类的特殊方法;一种简单的瓶装水检测方法;和一种与HACCP法规中相关的检测柑桔类水果汁中大肠杆菌的方法.
大肠杆菌和大肠菌群计数方法详细方法请见:http://www.hopebiol.com/standard/bzfdadcgj.html
我知道的只有尹红美兰检验法
这有一个比较专业的解释,你可以去看一下
以上

大肠杆菌的检测方法

各位,我请教大家一个问题,我上次做细菌培养实验,有两瓶培养基,都放在培养箱24小时,37度,也可能是42度,只有一瓶凝固,1.营养琼脂用来测细菌总数,(凝固了),2.另一是测大肠杆菌,(可能是虎红琼脂或者乳糖胆盐,前者可能性在,当时没有记清楚)紫红色的液体,没有凝固。这是为什么?如果是液体就没法测。

多管发酵法。

多管发酵法是一种检测水体中大肠杆菌的传统方法,这种方法是在44.5℃的含有荧光底物的培养基上连续培养24h,而后能产生分解荧光底物——葡萄糖醛酸酶,从而释放出荧光产物,进而使培养基在紫外光照射下产生特征荧光。此方法可被用来对原样品中的菌落数作统计学估计。

在单料或双料乳糖胆盐发酵管内发酵,分离培养试验,利用伊红美蓝培养皿分离,接着是在乳糖发酵管中进行二次发酵,最后通过芽孢染色、革兰氏染色、显微镜观察等来完成。多管发酵法对试验条件要求不高,成本低,但是检测时间较长,容易受其他条件干扰,进而影响到测定结果的精确度。

扩展资料:

注意事项:

1、检样时注意无菌操作。

2、稀释时采用的稀释液可以用磷酸盐缓冲液或生理盐水,接种时可采用九管法,设置三个梯度,分别为0.1g/mL、0.01g/mL、0.001g/mL,每一个稀释度的试管应充分混匀。

3、每次实验需要有阴性对照。

4、使用小倒管培养基配制时,为排净气泡,灭菌时不要把试管的盖子盖的太紧,灭菌后注意观察一下倒管中的气体是否排完全、

5、高压灭菌后等高压灭菌锅的压力表达到0,取出培养基放到冰箱冷却,效果会比较好。

参考资料来源:百度百科-大肠杆菌测试片

参考资料来源:百度百科-大肠杆菌

一、细菌的分离鉴定

1、标本:肠道外感染取中段尿、血液、脓液、脑脊液等,腹泻者取粪便。

2、分离培养与鉴定:粪便标本直接接种肠道杆菌选择性培养基。血液需先经肉汤增菌,再转种血琼脂平板。其他标本可同时接种血琼脂平板和肠道杆菌选择性培养基。

37℃孵育18~24小时后,观察菌落并涂片染色镜检。采用一系列生化反应进行鉴定。肠致病性大肠杆菌须先作血清学定型试验。必要时检定肠霉毒素。

泌尿系统除确定大肠杆菌外,还应计数,每毫升尿含菌量≥100,000时,才有诊断价值。

二、卫生细菌学检查

大肠杆菌不断随粪便排出体外,污染周围环境和水源、食品等。取样检查时,样品中大肠杆菌越多,表示样品被粪便污染越严重,也表明样品中存在肠道致病菌的可能性越大。故应对饮水、食品、饮料进行卫生细菌学检查。

1、细菌总数:检测每毫升或每克样品中所含细菌数,采用倾注培养计算。中国规定的卫生标准是每毫升饮水中细菌总数不得超过100个。

2、大肠菌数指数:指每立升中大肠菌群数,采用乳糖发酵法检测。中国的卫生标准是每1000ml饮水中不得超过3个大肠菌群;瓶装汽水、果汁等每100ml大肠菌群不得超过5个。

三、全自动微生物定量分析仪(TEMPO)检测

全自动微生物定量分析(TEMPO)仪的大肠杆菌群计数检测有TC和CC两种方法。TEMPO TC的开发是为了获得NF ISO4832标准相当性能水平。

TEMPO CC法是TEMPO仪器上根据BAM方法专门用于24h计数食品中大肠杆菌群的方法。该法是为了获得和AOAC官方方法966.24及美国公共健康联合会检测乳制品检测方发(SMEDP)一致的效果。TEMPO系统根据阳性空的大小和数目来推算出原始样本中大肠杆菌群数目。

扩展资料:

多管发酵法是一种检测水体中大肠杆菌的传统方法,这种方法是在44.5℃的含有荧光底物的培养基上连续培养24h,而后能产生分解荧光底物——葡萄糖醛酸酶,从而释放出荧光产物,进而使培养基在紫外光照射下产生特征荧光。

此方法可被用来对原样品中的菌落数作统计学估计。

一般涉及以下试验:首先是发酵,在单料或双料乳糖胆盐发酵管内发酵;然后是分离培养试验,利用伊红美蓝培养皿分离;接着是在乳糖发酵管中进行二次发酵,最后通过芽孢染色、革兰氏染色、显微镜观察等来完成。

多管发酵法对试验条件要求不高,成本低,但是检测时间较长,容易受其他条件干扰,进而影响到测定结果的精确度。

参考资料来源:百度百科-大肠杆菌

  大肠菌群系指一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌。该菌主要来于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
  食品中大肠菌群数系以100mL(g)检样内大肠菌群最可能数(MPN)表示。
  1设备和材料
  1.1温箱:361℃。 1.2 冰箱:0~4℃。 1.3 恒温水浴 :44.50.5℃。 1.4 天平。 1.5 显微镜。1.6 均质器或乳钵。 1.7 平皿:直径为90mm。 1.8 试管。 1.9 吸管。 1.10 广口瓶或三角烧瓶:容量为500mL。 1.11 玻璃珠:直径约5mm。 1.12 载玻片。 1.13 酒精灯。 1.14 试管架。
  2培养基和试剂
  2.1乳糖胆盐发酵管:按GB 4789.28中4.9规定。
  2.2伊红美蓝琼脂平板:按GB 4789.28中4.25规定。
  2.3乳糖发酵管:按GB 4789.28中4.10规定。
  2.4 EC肉汤:按GB 4789.28中4.11规定。
  2.5磷酸盐缓冲稀释液:按GB 4789.28中3.22规定。
  2.6生理盐水。
  2.7革兰氏染色液:按GB 4789.28中2.2规定。
  3.1检样稀释
  3.1.1 以无菌操作将检样25mL(或g)放于有225mL灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内予置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1:10的均匀稀释液。固体检样最好用均质器,以8 000-10 000 r/min的速度处理1min,做成1:10的均匀稀释液。
  3.1.2 用1mL灭菌吸管吸取1:10稀释液1mL,注入含有9mL灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内,振摇试管混匀,做成1:100的稀释液。
  3.1.3 另取1mL灭菌吸管,按上条操作依次做10倍递增稀释液,每递增稀释一次,换用1支1mL灭菌吸管。
  3.1.4 根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择三个稀释度,每个稀释度,接种3管。
  3.2乳糖发酵试验
  将待检样品接种于乳糖 胆盐发酵管内,接种量在1mL以上者,用双料乳糖胆盐发酵管,1mL及1mL以下者,用单料乳糖胆盐发酵管。每一稀释度接种3管,置361℃ 温箱内,培养242h,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按下列程序进行。
  3.3分离培养
  将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,置361℃ 温箱内,培养18-24h,然后取出,观察菌落形态,并做革兰氏染色和证实试验。
  3.4证实试验
  在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1-2个进行革兰氏染色,同时接种乳糖发酵管,置 361℃温箱内培养242h,观察产气情况。凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌,即可报告为大肠菌群阳性。
  3.5报告
  根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,报告每100mL(g)大肠菌群的MPN值。
  4粪大肠菌群(faecal coliform)
  4.1用接种环将所有产气的乳糖胆盐发酵管培养物(见3.2条)转种于EC肉汤管内,置44.50.2℃水浴箱内(水浴箱内的水面应高于EC肉汤液面),培养242h,经培养后,如所有EC肉汤管均不产气,则可报告为阴性;如有产气者,则将所有产气的EC肉汤管分别转种于伊红美蓝琼脂平板上,置 培养18-24h,凡平板上有典型菌落者,则证实为粪大肠菌群阳性。
  4.2结果报告
  根据证实为粪大肠菌群的阳性管数,查MPN检索表,报告每100mL(g)粪大肠菌群的MPN值。

如果是测食品中的菌落总数可以参照GB4789.2的方法,测定菌落总数用平板计数琼脂,大肠用VRBA
虎红琼脂不能测大肠菌群,内含抑菌成分会抑制大肠杆菌的生长
单料还是双料,要看你测的产品,需要加入的样品量,一般样品量>10ml可以选择日夏养花网双料

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本文标题: 急!!!多管发酵法测大肠杆菌数,复发酵管中颜色变化不完全的管子算是阳性管么?
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